野生型 Pfu 酵素の独自の修飾により、VeriFi® Hot Start Polymerase の精度が向上し、極めて低いエラー率と、Taq DNA ポリメラーゼの約 100 倍高い忠実度が得られます。この新しい酵素は、クローニング、部位特異的変異誘発、シーケンシングなど、優れた精度が求められる用途に最適です。
VeriFi® Hot Start Polymerase には、dNTP、Mg、エンハンサーなどの高度なバッファー システムが備わっており、GC や AT の含有量に関係なく、幅広いターゲットやフラグメント サイズの高忠実度 PCR が可能になります。GC リッチなシーケンスや複雑な二次構造を持つシーケンスなど、最も困難なテンプレートの場合、PCR パフォーマンスを向上させるために VeriMax Enhancer を反応ミックスに追加するオプションがあります。
VeriFi® Hot Start Polymeraseは、プライマーとテンプレート以外のすべての反応成分を含む便利な 2x レディミックスとしてもご利用いただけます。当社の 2x red mix には、アガロースゲル電気泳動中の直接ローディングおよび追跡に適した赤色色素が含まれています。
参考データ1:マルチプレックス反応における優れたパフォーマンス
異なるアニーリング温度 (A: 63.0 °C、B: 61.5 °C、C: 60.5 °C) でのラムダファージゲノム (6 ターゲット) とマウスゲノム (4 ターゲット) を使用した 10 プレックス PCR。開始テンプレート量は、ラムダ DNA 1 pg とマウス gDNA 1 ng です。アンプリコンの長さは 139 bp から 962 bp です。反応は、製造元の推奨に従ってマスターミックス形式を使用してセットアップされました。サイクル条件は、95 °C 2 分、95 °C 15 秒の 40 サイクル、A から C へのアニーリング 30 秒、72 °C 90 秒でした。 L: PCRBIO ラダー III。P: 単一産物の参照プール。
VeriFi® Hot Start Mix は、主要な競合製品と比較して、マルチプレックスにおいて優れた感度と特異性を発揮します。
参考データ2:広範囲の GC および AT コンテンツでの PCR の成功
PCRBIO HS VeriFi® Mix を使用して、GC 含有量が 28.7% ~ 83% の 13 のターゲットを増幅しました。開始テンプレート量は 30 ng のマウス cDNA です。バンド サイズは 99 bp ~ 274 bp です。サイクル条件は、98 °C 5 分、98 °C 15 秒の 40 サイクル、54 °C ~ 62 °C (ターゲットによって異なります) で 15 秒、72 °C 30 秒のアニーリングでした。L: PCRBIO Ladder III。
参考データ3:PCRの成功率と複雑なターゲットに対する一貫性の向上
異なるアニーリング温度(A:68.5 °C、B:66.0 °C、C:63.0 °C、D:60.5 °C)でのヒトβ-グロビン遺伝子の13.5 kb断片の増幅。開始テンプレート量は30 ngのヒトゲノムDNAです。GC含有量は37%です。反応はマスターミックスフォーマット(タカラのPrimeSTAR® GXL DNAポリメラーゼ以外)を使用して、製造元の推奨事項に従ってセットアップされました。サイクル条件は、95 °C 2分、その後95 °C 15秒、アニーリング15秒、72 °C 12分を30サイクルでした。
VeriFi® Hot Start Mix は、主要な競合製品と比較して、より高い収量と特異性を示します。PCRBIO ミックスは、アニーリング温度範囲全体にわたって、より高い一貫性と汎用性も示します。
Markoulatos, P., Siafakas, N. & Moncany, M. Multiplex polymerase chain reaction: a practical approach. J Clin Lab Anal16, 47-51, doi:10.1002/jcla.2058 (2002).
Radhika, M., Saugata, M., Murali, H. S. & Batra, H. V. A novel multiplex PCR for the simultaneous detection of Salmonella enterica and Shigella species. Brazilian Journal of Microbiology45, 667-676, doi:10.1590/s1517-83822014005000041 (2014).
Perez-Perez, F. J. & Hanson, N. D. Detection of plasmid-mediated AmpC beta-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR. J Clin Microbiol40, 2153-2162, doi:10.1128/jcm.40.6.2153-2162.2002 (2002).
Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. J Vis Exp, e3998, doi:10.3791/3998 (2012).
DNA の GC 含有量が高いため、PCR 産物の収量が低くなっています。この場合、VeriFi® Hot Start Polymerase の最適な変性温度と時間はどれくらいですか?
GC を多く含む DNA を扱っていて、PCR 産物の収量が低すぎる場合は、変性温度を 98 ~ 100 °C に上げてみてください。VeriFi® Hot Start Polymerase はこれらの温度に耐えることができ、95 °C での変性に比べて GC 含有量の多い DNA の収量が増えることがわかっています。変性時間は、必要に応じて 10 秒から 30 秒まで変更できます。
野生型 Taq DNA ポリメラーゼと比較した VeriFi® Hot Start Polymerase の忠実度はどれくらいですか?
VeriFi® Hot Start Polymerase はエラー率が非常に低く、野生型 Taq DNA ポリメラーゼよりも約 100 倍高い忠実度を持っています。
VeriFi® Hot Start Polymerase の推奨延長時間はどれくらいですか?
真核生物 DNA からの増幅には、1 キロベース (kb) あたり 30 秒が推奨されます。収量が予想よりも低い場合は、この時間を 40 秒/kb まで増やすことができます。伸長時間を 30 秒/kb 未満に減らすことは推奨されません。これは、生成物形成の収量が大幅に減少するためです。テンプレート DNA をロードしすぎないように注意してください。増幅後に非特異的バンドが存在する場合は、テンプレート DNA の量を減らす必要があります。アニーリングと伸長を組み合わせた 2 段階プロトコルも可能です。マニュアルで推奨されている条件と濃度から逸脱する場合は、サイクリング条件とテンプレート濃度の最適化が必要になる場合があります。
VeriFi® Hot Start Polymerase を使用して生成されたフラグメントでは、どのような種類のクローニング戦略を使用すればよいですか?
VeriFi® Hot Start Polymerase によって生成された PCR 産物は平滑末端を持っているため、さらなる修飾を必要とせずに平滑末端クローニングに適しています。
A オーバーハングを追加したい場合は、Taq DNA ポリメラーゼまたは Klenow (exo-) DNA を使用し、その後 TA クローニングを行うことができます[1]。Aオーバーハングの追加を進める前に、反応からVeriFi® Hot Start Polymerase が除去されていることを確認してください。VeriFi® Hot Start Polymerase が存在する場合、酵素の3’-5’エキソヌクレアーゼ活性によりAオーバーハングが除去されます。
Yao, S., Hart, D. J. & An, Y. Recent advances in universal TA cloning methods for use in function studies. Protein Eng Des Sel, doi:10.1093/protein/gzw047 (2016).